LipofectamineTM 2000
CAT. NO. 11668-027 Size: 0.75ml CAT. NO. 11668-019 Size: 1.5 ml
4℃储存(不要冻存) 说明:
LipofectaminTM 2000是核酸(DNA或RNA)转染真核细胞的一个专用的试剂盒,其有如下优点:
? 对各种细胞及细胞板(如96孔板)都有高的转染效率,在www.invitrogen.com 的细胞
系数据库中有各种细胞转染成功的实例。
? 在含有或是不含有血清的培养基中,DNA- LipofectaminTM 2000复合物能够直接加给细
胞。
? 在转染之后不需要除去复合物以及添加或是更换培养液,但在培养4-6小时后需要除去
复合物。
关于转染的一些重要建议:
1. 不要用即将要介绍的转染程序进行RNAi的转染实验。在www.invitrogen.com/rnai上有转染步骤,登陆后点击说明。
2. 对于大多数细胞系,转染复合物中DNA(μg)与LipofectamineTM 2000(μl)的比例
在1:2到1:3之间,最好达到最优化的比例。注意:在混合之前,我们建议用Opti-MEM I 低血清培养基(Cat: NO.31985-062)(reduced serum medium)稀释LipofectamineTM 2000和DNA. 3. 为了实现高的转染效率、高的目的基因表达水平以及低水平细胞毒效应,受体细胞
最好达到高的浓度:在转染时,细胞的培养液的混浊度建议为90%-95%并最优化混浊度。此外,在实验过程中保证相同的接种条件。 4. 为避免细胞死亡,在培养基中不要加抗生素。
5. 由于一些无血清复合物(如CD239、SFM II、VP-SFM)会抑制阳离子脂质体介导
的转染,因此有必要检测一下无血清培养基和LipofectamineTM 2000的相容性。
转染步骤(用于DNA):
按照如下步骤在24孔板中转染哺乳动物细胞。对于其它种类细胞板请参照转染量度标准。步骤中均按照一个细胞孔的量给出质量和体积。
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1. 贴壁细胞:转染的前一天,在500μl无抗生素培养基中接种0.5-2×10个细胞,以保
证在转染时候细胞的混浊度达到90%-95%。
悬浮细胞:在准备转染混合物时,每500μl无抗生素培养基中含有细胞数量为4-8×5
10。
2. 对于每个转染样品,按下面的方法准备:
a、 在50μl无血清Opti-MEM I 低血清培养基中(或是其它无血清培养基)稀释DNA,
并轻轻混匀。
b、 使用前轻轻混匀LipofectamineTM 2000,然后取相应的量稀释在Opti-MEM 培养基中。
室温下静置5分钟。注意:要在30分钟内混合LipofectamineTM 2000和DNA的稀释液。
c、 室温下静置5分钟后,混合LipofectamineTM 2000和DNA的稀释液(总体积为
100μl)。轻轻混匀并在室温下静置20分钟(溶液混合后可能会看上去浑浊)。注
意:混合物在室温下的6个小时内不会失效。
3. 细胞板的每个孔中加混合液100μl,并前后轻轻摇动细胞板使混合液与孔中的培养液
混匀。
4. 检测目的基因的表达情况前,细胞于37℃ CO2培养箱中培养18-48小时。此时不需要
改变培养基,但4-6小时后也许需要更换.
5. 对于固定的细胞系:转染24小时后将细胞以1:10(或更高的稀释度)稀释度转移到
新鲜的生长培养基中。如果需要的话,在以后的培养中可以在培养基中加入选择培养基。 对于悬浮的细胞系:转染4小时后,如果需要,加入PMA和/或PHA以提高CVM启动子的活性并促进基因表达。
转染量度标准:
在不同的组织培养板中转染细胞时,根据相对的表面积,按比例加入LipofectamineTM 2000、细胞、和培养基,具体情况剪下表。在自动、高产率体系中,建议96孔板的转染混合物的体积为50μl。注意:操作时,可以直接将细胞混入转染混合物中进行快速的96孔板转染。在细胞板中准备好转染混合物,然后直接加入说明中正常100μl体积时浓度的2倍浓度细胞培养液。在转染混合液存在情况下,细胞可以正常的贴壁。 培养容器 96孔板 24孔板 12孔板 35mm板 6孔板 60 mm板 10cm板 每个孔的表2面积(cm) 0.3 2 4 10 10 20 60 相对于24孔板的表面积 0.2 1 2 5 5 10 30 铺板培养基体积 100μl 500μl 1ml 2ml 2ml 5ml 15ml DNA(μg)/培养基(μl) 0.2μg/25μl 0.8μg/50μl 1.6μg/100μl 4.0μg/250μl 4.0μg/250μl 8.0μg/0.5ml 24μg/1.5ml LipofectamineTM 2000(μl)/培养基(μl) 0.5μl/25μl 2.0μl/50μl 1.0μl/100μl 10μl/250μl 10μl/250μl 20μl/0.5ml 60μl/1.5ml 注意:表面积是根据培养容器的实际测量得到,但也会根据容器生产商的不同发生变化。
优化转染:
为了得到高的转染效率和低的无用副效应,通过改变细胞浓度、DNA以及LipofectamineTM 2000的浓度来优化转染条件。另外,要保证细胞培养基的细胞混浊度高于90%,DNA(μg)与LipofectamineTM(μl )2000的比例在1:0.5到1:5之间。
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