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Western-Blot-原理和操作方法(全)

来源:用户分享 时间:2025/7/5 17:43:03 本文由loading 分享 下载这篇文档手机版
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FFFF. 纯化过的目的带包括其上下都出现了色带,而且对照菌也出现了条带,会是什么原因? 解答:一抗有问题,效价太低,且未纯化;表达量太低;提蛋白时可能出

了问题。

GGGG. 做Western Blot的检测的时候,用DAB显色还能看出条带,但是换成ECL的时候什么样结果都没有。我用的NOVA公司的发光底物,胶片是普通的X片,定影液和显影液都是别人留下来的,不知道是什么原因?

解答:一般的说,Ecl比DAB更灵敏,但是DAB是HRP最敏感的底物,所以有几种可能: ECL底物失活了,你可以检测一下;敏感度正好不到ECl底物的范围。DAB能显色可不能催化ECL底物;显影液没用了。

HHHH. 怎样分析结果,需要什么软件?

解答:如果你做定量或办定量,至少要用到一个光密度扫描分析软件,如果不是,直接分析就可以了。

IIII. 积层胶、分离胶一般多少左右合适? 解答:一般电泳是积层胶60-80v,分离胶100v。

JJJJ. 采用生物素标记的二抗-SABC-DAB检测系统做western,非特异性的条带和背景高?总蛋白考染的时候发现接近积层胶的条带比较清楚,条带也很窄,可是越靠下面的条带越来越宽,有的跑得都连在一起了,这是什么原因,如何解决?sds-page的时候恒压和恒流哪个好?

解答:非特异性的条带和背景高:可能性太多了,一抗,二抗,封闭的原因都可能。 总蛋白考染的时候发现接近积层胶的条带比较清楚,条带也很窄,可是越靠下面的条带越来越宽,有的跑得都连在一起了,这是什么原因,如何解决?正常的,另外,是否是你的积层胶有问题。sds-page的时候,恒压和恒流都可以用。

KKKK. 血清样品进行Western Blot 分析,目的蛋白21kD,结果显色出来后,目的条带很淡,而白蛋白和IgG条带很浓?

解答:可能是因为白蛋白为67kD和目的蛋白相差教大,且他的浓度较低,你可以以底物二氨基联苯胺和0.01%过氧化氢溶液显色的时间延长为30分钟,再用去离子水漂洗以终止

反应;也可能是抗体的特异性不好。把封闭的时间延长,同时提高封闭液的浓度,可以减少以下背景噪音。同时洗的时候要彻底,而目的条带弱,说明浓度不足,如果不考虑后续功能的话,你可以过G-50(细)柱子,纯化你的靶蛋白,接着真空冷冻浓缩,可以得到很漂亮的结果。

LLLL. Western转膜已经成功了,但是Marker泳道未见蛋白条带(正常应该有6条),其余各泳道均有清晰的蛋白条带,经考马斯亮蓝染胶,结果相同。经5%的脱脂牛奶封闭1小时45分钟后,进行一抗孵育(1:200,建议起始浓度)过夜,二抗孵育5个半小时(1:2000),均在室温下,DAB显色,虽出现蛋白条带,但较弱,且出现非特异性条带。请问:1、Marker是MBI公司的,可分离14-116KD的蛋白,买了大概有一年的时间,是否有问题?2、一抗(为多克隆抗体)、二抗的浓度及孵育的时间是否合适? 3、封闭的时间是否太短?

解答:1. marker 有可能被降解了, 也有可能是它标称的上样量太少,不够,我做过一个标称每次5ul可我上了20ul才行的。

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