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2015-动物实验基本操作

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的木钩上,如下图2。

2、气管插管操作要点

1)用手术刀时,先用手或器械使两侧组织牵拉紧张情况下,以刀刃作垂直的

轻巧的切开,不要作刮削的动作。

2)气管插管术操作要点():

①颈部正中切开皮肤,钝性分离暴露气管、穿线备用。

②于气管中段第三或第四软骨环上向头端作一纵向倒“T”形切口。 ③将气管导管由切口向胸部方向插入气管腔内。

④在气管软骨环之间进行结扎,并将棉线固定于插管分叉处。 3、动脉插管操作要点

①于气管一侧小心分离颈总动脉约3cm穿两线备用。 ②远心端结扎、近心端用动脉夹夹紧。

③用眼科剪与血管呈45℃的角度从远心端开始在向心一侧剪开管壁的1/3。

④插管前导管和压力换能器的肝素化。 ⑤插管后结扎固定。 注意事项

1、麻醉动物时,注射速度先快后慢, 边注射边观察动物麻醉指征。如麻醉过浅,

动物挣扎时可适量追加麻醉药, 切忌麻醉过深引起家兔死亡; 2、手术过程中操作应轻柔,尽量避免不必要的损伤和出血; 3、手术时, 切开颈部皮肤后, 尽量钝性分离, 以免损伤血管; 4、气管插管前,应注意止血,并将气管分泌物清理干净;

5、动脉导管的插入端要光滑,不能过尖,以防刺破动脉壁,引起大出血。 6、未扎紧动脉插管前不要松动动脉夹。

实验三、实验性肺水肿

【实验原理与目的】肺水肿是临床上常见的危重症之一,肺水肿是指过多的液体积聚在肺间质或溢入肺泡腔内的病理状态。当肺毛细血管流体静脉压增高、血浆胶体渗透压降低,肺微细管壁通透性增高、肺淋巴回流障碍等因素的某个或多个同时或相继作用,一般水肿液先在组织间隙中积聚,形成间质性肺水肿,然后发展为肺泡性肺水肿。肺水肿发生后,可引起气体弥散障碍以及肺泡通气与血流比例失调(如果气道内存在水肿液,还会引起通气障碍),最终导致呼吸功能不全。大剂量肾上腺素可引起机体血液重新分布,外周血管广泛收缩,血液由体循环急速转移到肺循环,使左心房压力和肺毛细血管有效滤过压增高,液体流入肺间质增多而出现肺水肿。

本实验的目的是用大剂量肾上腺素复制肺水肿模型,观察急性肺水肿的表现,分析发病机理。

【实验对象】SD大鼠,雌雄不限,体重180-250g。

【实验器材和药品】

器材:弹簧磅秤,电子天平,手术器械1套,2ml,5ml注射器,听诊器1具,滤纸。

药品:生理盐水,0.1%盐酸肾上腺素注射液,20%氨基甲酸乙酯溶液(乌拉坦,4-5ml/kg体重,麻醉用)。

【实验步骤和观察指标】

1.取180-250g左右体重相近的大鼠两只,做好标记(甲鼠、乙鼠),称重,观察动物的一般情况、呼吸和肤色。

2.甲鼠腹腔注射0.1%盐酸肾上腺素注射液1.5~2ml;乙鼠腹腔注射同体积生理盐水。观察动物变化如活动情况、呼吸、肤色并做肺部听诊肺呼吸音,注意口鼻有无泡沫液体流出。如动物死亡,记录时间;若注射药物20min后动物未死亡,可按0.3%戊巴比妥钠溶液1ml/100g腹腔注射,带麻醉成功后剪断动脉快速放血处死。

3.解剖尸体,止血钳夹住气管后取出心肺,然后将心脏分离(注意不要损伤肺组织),将表面血迹用滤纸擦去后准确称重,肉眼观察肺大体改变,剪开肺组织,注意观察有无泡沫样液体流出。

4.计算大鼠肺系数。肺系数计算公式:肺系数=肺重量(g)/体重(kg)。正常大鼠肺系数为4~8。

【注意事项】

1.解剖动物时,注意不要损伤肺表面和挤压肺组织,以防止水肿液流出,影响肺系数。

2.对照鼠处死方法只能采用快速放血法,其他处死方法均可引起肺水肿。

【思考题】

1.实验鼠发生肺水肿的机制是什么?

2.实验鼠发生的呼吸变化发生机制是什么?

2020-2-8

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