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学位论文4 - 图文

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徐州医学院硕士论文

(5) 弃ddH2O,加入BCIP/NBT SOLUTION 1 mL,常温显色,出现满意条带

后立刻将NC膜置入ddH2O中终止反应。取出晾干、拍照保存。

2.5 免疫荧光检测NF-κB p65的核转位情况

免疫荧光具体步骤如下:

(1)用PBS稍加润洗。

(2)吸去PBS,将细胞泡在2-3mm厚的4%甲醛溶液(PBS配制)中。 (3)室温下固定细胞15分钟。

(4)吸去固定剂,用PBS润洗三次,每次5分钟。

(5)甲醇打孔步骤:在甲醛固定后,将细胞浸泡在冰甲醇中,-20℃孵育10

分钟。

(6)用PBS润洗5分钟。

(7)继续下面免疫染色步骤(以下步骤在避光湿盒中进行) (8)将样品在封闭液中封闭60分钟。

(9)封闭结束前,按说明书的指示用抗体稀释缓冲液稀释一抗。 (10)吸去封闭液,加入稀释的一抗。 (11)4℃孵育过夜。

(12)用PBS润洗3次,每次5分钟。

(13)把荧光素标记的二抗稀释在抗体稀释液中,加二抗在室温下避光孵育

1-2小时。

(14)PBS润洗切片。 (15)DAPI孵育15-30分钟。 (16)PBS润洗2次

(17)立即在显微镜下用相应波长激发光观察样品可以得到最佳的效果。若长

期保存,将玻片放在4℃ 避光保存。

2.6 统计学处理

使用SPSS16.0软件包处理,定量资料用均数±标准差(x±s)表示,两组间比较采用t检验,多组间比较采用单因素方差分析。P<0.05表示差异有统计学意义。

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结 果

1 人脐静脉内皮细胞的培养与鉴定

正常HUVEC呈上皮样贴壁生长,铺路石状镶嵌排列。细胞为梭形,细胞核轮廓清晰,细胞核可见,胞浆丰富。VE-Cadherin免疫荧光染色鉴定的结果为阳性,证实培养的为人脐静脉内皮细胞(图4)。选择10代以内,生长旺盛、形态良好的细胞用于实验。

2长春瑞滨对人脐静脉内皮细胞形态学改变的影响

正常对照组HUVEC呈上皮样贴壁生长,铺路石状镶嵌排列。细胞为梭形,细胞核可见,胞浆丰富。0.05 mg/LVIN处理1h后细胞拉伸,延展,形态不规则,边界不清,排列紊乱,部分细胞悬浮脱落。洗去VIN继续培养6h、12h后,细胞形态逐渐恢复正常(图5)。

3 长春瑞滨对人脐静脉内皮细胞TLR4 mRNA的表达的影响

荧光定量PCR法检测各组细胞TLR4基因表达水平,结果显示:与空白对照组相比,0h组、6h组、12h组表达量升高,差异有统计学意义(P<0.05),其中0h组升高幅度最大,与6h组、12h组相比差异有统计学意义(P<0.05);6h组表达水平较12h组明显升高,差异有统计学意义(P<0.05),TLR4基因表达水平随时间的递增而呈递减趋势(图6)。

4 长春瑞滨对人脐静脉内皮细胞TLR4蛋白的表达的影响

Western-blot检测各组细胞TLR4蛋白表达水平,结果显示:与空白对照组相比,0h组、6h组、12h组表达量升高,差异有统计学意义(P<0.05),其中12h组升高幅度最大, TLR4蛋白表达水平随时间的递增而呈递增趋势(表3,图7)。 5 长春瑞滨对人脐静脉内皮细胞NF-κB p65核转位的影响

免疫荧光检测各组细胞NF-κB p65的核转位情况,结果显示:与空白对照组相

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比,0h组、6h组、12h组的核转位率均有升高,其中0h组、6h组升高幅度较大,差异有统计学意义(P<0.05),NF-κB的核转位率随时间的递增而呈递减趋势(图7)。

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讨 论

药物性静脉炎是临床常见的药源性疾病之一,其发病率高,常给患者造成很多不必要的生理、心理痛苦和医疗支出。其中有1/ 3 可能因此导致新的并发症、增加更多药物的治疗,造成患者住院时间延长,甚至影响化疗方案的顺利进行

[47-50]

,在一定程度上限制了一些药物的临床应用。虽然临床工作者通过一些防护

措施可以减少静脉炎的发生,但由于长春瑞滨是中度发疱剂,静脉注射时静脉炎的发生仍不可避免。时至今日,药物性静脉炎发生的确切机制仍不清楚,国内外资料仍缺乏对该类静脉炎机制深入的系统性研究。

近年来TLRs在机体免疫应答中的作用受到高度关注。TLR4作为TLRs大家族的一员,是一种跨膜信号传递的模式识别受体,参与识别病原体相关分子模式,是联系固有免疫和适应性免疫应答的关键分子。它由胞外功能区、跨膜区及细胞内的TIR区域( Toll-interleukin 1 receptor region,TIR)三部分组成。胞外功能区由富含亮氨酸的重复单位组成;胞内的TIR区域有一段与IL-1受体高度同源的保守序列,约含160个功能性氨基酸序列,可与下游衔接蛋白作用,活化信号通路,激发促炎症因子的释放。

TLR4介导的信号途径,包括MyD88 依赖性和MyD88 非依赖性途径。MyD88 依赖性途径主要是介导NF-κB活化和细胞因子产生。MyD88是一种接头分子,TLR4上的TIR结构域与MyD88蛋白羧基端相互作用使其活化,活化的MyD88可诱导IL-1受体相关激酶磷酸化,进而激活胞质内的肿瘤坏死因子受体相关因子6,活化后的TRAF6通过转化生长因子TGF-β活化激酶与IKK信号级联,使IKB磷酸化而降解,从而使NF-κB游离并移位到细胞核中,结合到靶向的DNA,促使TNF-α及IL-1、6、8、12等多种炎症基因的转录[51-53]。另外,还存在MyD88非依赖的信号通路,LPS可以刺激MyD88缺陷的巨噬细胞表达干扰素诱导蛋白10,表达干扰素诱导基因需要依赖TLR4,但不依赖MyD88,而是通过干扰素调节因子3和NF-κB发生的。

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