表1. 水稻突变体资源和侧翼序列数据库(Krishnan et al., 2009) Table 1. Rice mutant resources and flanking sequence databases
Institution
CIRAD-INRA-IRD-CNRS, Génoplante, FR CSIRO Plant Industry, AU
Genotype
Mutagen
Mutated Loci 45,000 100,000 16,000
FSTs/Screen FSTLines
Availability 14,137 13,745 611
17,414 11,488 (March 2009)
Database Web Site Contact
http://urgi.versailles.inrE. Guiderdoni a.fr/OryzaTagLineguiderdoni@cirad.fr
Nipponbare T-DNA ET
Tos17 Nipponbare Ac-Ds GT/ET
Approximately 50% http://www.pi.csiro.au/fN.M. Upadhyaya lines no seed grttpubnarayana.upadhyaya@csiro.a
u
EU-OSTID, EU Nipponbare Ac-Ds ET IRRI, PH
IR64
Fast neutron γ-ray DEB, EMS Ac-Ds GT
25,000 500,000
1,380 Deletion database: 400 genes 4,820
1,300 Selected linesb
http://orygenesdb.cirad.E. Guiderdoni fr/guiderdoni@cirad.fr
http://www.iris.irri.org/H. Leung h.leung@cgiar.org cgibin/MutantHome.pl
Gyeongsang National
University, KR NIAS, JP NIAS, JP
Dongjin Byeo
30,000 4,820
KRDD
http://www.niab.go.kr/RDS
C.-D. Han
cdhan@nongae.gsnu.ac.kr
Nipponbare Tos17 500,000 34,844 DNA pools
34,844 Selected lines
http://tos.nias.affrc.go.jH. Hirochika phirohiko@nias.affrc.go.jp
Nipponbare γ-ray ion beam 15,000 M2 M. Nishimura
7,000 M2
POSTECH, KR Dongjin,
Hwayoung
T-DNA ET/AT Tos17
150,000 400,000 113,262 14,197 1,101 97,500 20,000 30,000 20,000 6,000
84,680
58,943
nisimura@affrc.go.jp
RISD G. An genean@postech.ac.kr http://an6.postech.ac.kr
/pfg
Q. Zhang
qifazh@mail.hzau.edu.cn
HuazhongAgriculZhonghua 11 T-DNA ET tural University, Zhonghua 15 CN Nipponbare SIPP, CN
Zhonghua 11 T-DNA ET
16,158
26,000 Dec. 2008 RMD
http://rmd.ncpgr.cn
8,840 3,500 18,382 Ds 4,735 dSpm 9,469 TILLING screen 1,009
8,840 FST + 11,000 http://ship.plantsignal.cF. Fu ship@sibs.ac.cn
lines n/home.do
Temasek Nipponbare Ac-Ds GT
Lifesciences, SG
IPMB, Academia Tainung 67 T-DNA AT Sinica, TW
University of Nipponbare Ac-Ds GT California, Davis Spm/dSpm University of Nipponbare Sodium azide California, Davis + MNU Zhejiang
University, CN Zhejiang
University, CN
Nipponbare T-DNA Zhonghua 11 Kasalath SSBM
γ-ray EMS
2,000 31,000 4,630 9,036 Selected lines 1,009 Selected lines
R. Srinivasan sri@tll.org.sg
TRIM Y.C. Hsing
http://trim.sinica.edu.tw bohsing@gate.sinica.ed.tw http://www-plb.ucdavisV. Sundaresan .edu/Labs/sundarsundar@ucdavis.edu
http://tilling.ucdavis.edL. Comai ulcomai@ucdavis.edu
40,000
http://www.genomics.zjP. Wu clspwu@zju.edu.cn u.edu.cn/ricetdna
http://www.genomics.zjP. Wu clspwu@zju.edu.cn u.edu.cn
2.本研究的目的和意义
本研究在通过在水稻粳稻品种中花11为材料构建Tos17插入突变体库,运用接头PCR的方法分离Tos17插入侧翼序列,筛选后代突变体观察突变表型并且进行共分离的验证。本研究的目的和意义在于:1) 构建水稻中花11 Tos17插入突变体库,分离侧翼序列,为水稻突变体的正反向遗传学研究搭建平台。2) 通过侧翼序列的生物学分析,研究Tos17插入位点的特征。3) 对突变体后代进行表型和基因型的共分离鉴定,为克隆水稻基因提供材料。4) 与我室T-DNA插入突变体库形成互补,研究我室T-DNA插入突变体库中的Tos17转座情况。
3材料和方法 3.1材料 3.1.1植物材料
材料为水稻粳稻品种中花11号,由华中农业大学作物遗传改良国家重点实验室提供。 3.1.2试剂
限制性内切酶、外切酶、rTaq、DNA连接酶,组培所用试剂均由Takara公司提供。
PCR引物由英杰公司合成。 其余试剂均为国产分析纯 3.2方法
3.2.1 T0代植株的创建
将野生型中花11种子脱壳,干燥-20℃保存。
将野生型中花11种子,于75%酒精中消毒15min,10%HgCl2消毒30min,转移到诱导培养基中。待30天后愈伤长出,为防止产生的后代Tos17突变体之间有相同的突变位点,所以每一颗种子诱导出的愈伤仅取一颗转移到继代培养基中,继代培养3个月,每30天更换培养基一次。共计诱导种子32000颗,产生愈伤25365颗。将经过3个月继代培养的愈伤转移到分化培养基中,分化产生T0代突变植株。每一个愈伤上诱导出的植株只取一株,夏季种于武汉华中农业大学试验田,共计产生T0代Tos17突变体15,543株。培养基配方见林拥军博士论文。
3.2.2 DNA抽提小样(CTAB法)
本研究中共分离检测所用样品DNA使用CTAB小样法抽提。取3cm左右长的新鲜水稻叶片,在800μl 1.5 ×CTAB中研碎,56℃水浴30min,上下颠倒数次,加入600μl 氯仿:异戊醇(体积比24:1),摇30min,11,500rpm室温离心10分钟,吸上清450μl,加入2倍体积预冷的95%乙醇,-20℃冰箱中20min以上,12,000rpm离心15min;倒掉上清,用75%乙醇浸洗沉淀,自然风干,DNA沉淀溶于100μl 无菌水中。
3.2.4侧翼序列用DNA样品分离(CTAB法)
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