将瘤胃液直接加入系统中；如研究目的为测定微生物的养分需要量，则应向系统中加入提取的瘤胃微生物。 ⒊ 维持厌氧状态：
发酵系统应有良好的气密性，以防止空气进入。发酵开始前向系统中通入CO2
和N2的混合气体（CO2 95%+N2 5%），以排除原有空气。发酵过程中的厌氧状态可以通过不断通入CO2（40m2/min）来维持，气密性良好的情况下也可靠发酵过程中产生的CO2来维持。 ⒋ 搅拌：
在持续发酵装置中可以通入的CO2起到搅拌的作用，也可由电机（6-7转/分）或磁力搅拌器进行搅拌。发酵系统的搅拌不易太剧烈，有研究表明剧烈搅拌对纤维素的降解有不利影响。 ⒌ 氧化还原电位（Eh）：
在厌氧环境中，不断积累的还原性物质使发酵系统的还原性不断增强。在瘤胃内通过产生烷排除多余的电子对，将瘤胃液的Eh维持在-350-500μV之间。对于持续发酵的人工瘤胃系统可以通过加入还原剂调节Eh，常用的还原剂有硫化铜、维生素C及半胱氨酸和胱氨酸等。
四. 持续动态人工瘤胃发酵系统RSⅠ—Ⅱ
RSⅠ—Ⅱ是中国农业大学动物科技学院冯仰廉主持研制的持续动态系统。该系统吸收了短期发酵装置和尼龙袋为固相的长期发酵装置（Rusitec）的优点，进行试验研究的重复性好，不同试验周期和不同发酵罐间测定结果的变异系数一般小于5%。该系统在模拟瘤胃内环境方面做到了非均一性，即在让饲料与发酵测定混合的同时，可以模拟瘤胃内饲料自然分层的现象。发酵罐的喂料量和喂料次数可人为调节，持续发酵间长达10天以上，能模拟真实瘤胃内固相和液相外流速度的不同状况，试验期间可收集发酵产生的气体。 ⒈ RSⅠ—Ⅱ的设计与组成
10-1是Ⅰ—Ⅱ的正面图，装置放在长×宽×高为180cm×120cm×60cm的操作台上。装置的支架为长方体框架，长×宽×高为140cm×40cm×90cm，用3cm的三角铁焊成。框架上面是一块厚3cm的木板，上面安装有电机、减速器及连杆、温度控制仪。
框架内下部放有137cm×37cm×30cm的有机玻璃水槽，外周是硬质塑料板。有机玻璃槽内底部有6个发酵罐固定座，用于固定6个发酵罐。框架前面的操作台上放有蠕动泵和缓冲液槽。框架左上侧固定有电源板，由下面的稳压器输送电流。操作台的右侧为高纯二氧化碳瓶。
图10－1 北京农大RSⅠ—Ⅱ正面图。
图10-2 北京农大RSⅠ—Ⅱ背面图
10-2是RSⅠ—Ⅱ的背面图，紧靠框架的6个细长管为集气管，与集气管在一起的6个罐是气液分离罐，操作台下有6个集液瓶。
图10-3 北京农大RSⅠ—Ⅱ功能单位图
RSⅠ—Ⅱ装置有6个发酵罐，因此有6个功能单位。10-3是一个简化的功能单位图，从右侧到左侧依次为缓冲液槽、蠕动泵、发酵罐、集气管、气液分离罐和集液瓶。
按照功用，可以将RSⅠ—Ⅱ功分为发酵系统、温度控制系统、搅拌系统和样品收集系统4大部分。分述如下：
发酵系统
该系统由发酵罐、蠕动泵和缓冲液槽组成。蠕动泵（L-07524-10，Cole-perm Inc.USA）有6根输液管道，分别接6个发酵罐，输液范围为0－36ml/min，其作用是以恒定速率同时把缓冲液连续输入6个发酵罐。10-3右侧为蠕动泵，同时显示了连接路线。
10-3中间是发酵罐的示意图，为有机玻璃制成，高20.5cm、内径9.0cm，容积约1300ml，发酵罐的盖分上下两层，中间用密封圈密封。盖面上共有5个连接内外的管道，外长均为4cm，中央管道是搅拌条的通道，通道管外刻有螺纹，内有一圆形小槽，装满密封油，然后用有机玻璃螺母旋紧密封，并保证搅拌条上下自如运动。发酵罐盖中央管道的周围有4个管，与蠕动泵软管连接的是缓冲液入孔，内径3cm，罐内长17cm。与样品收集部分相联的是外流液出孔，内径3cm，罐内长3cm，外流液出管的罐内部分接尼龙网管，长10cm，通过改变尼龙网的孔径控制流出颗粒的大小。外流液出孔与样品收集系统之间用内径3cm的软质透明塑料管连接。喂料管较粗，内径5cm，罐内长度8cm；另外一个内径3cm的管为输气管，罐内长10cm，从输气管通入二氧化碳维持厌氧发酵。上述4个管的出口处都由开关控制。
温度控制系统
温度由电热管和控温仪调节。该系统包括有机玻璃水槽、电热管、控温仪和小型循环水泵。有机玻璃水槽的容积为135cm×30cm×24cm，槽底平面上有6个发酵罐固定支架；水槽两端各有一根800W的电热管，与控温仪（wmzk-02型，上海医用仪表厂）相连，温敏探头放入水槽中间，精度为±0.5℃；水槽内一端固定一台小型循环
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