WB-protocol
配液：
1mol/L Tris-HCl：12.114g Tris-base，加水至100ml，PH6.8 1.5mol/L Tris-HCl：18.7g Tris-base，加水至100ml，PH8.8 10％SDS： 5g电泳级SDS加水定容至50ml，可加热至68℃助溶 Acrylamide 29g
30%丙烯酰胺 methylene diacrylamide 1 g
加水至100ml溶解，避光4℃保存
{ 将29g丙烯酰胺和1g N，N’-亚甲双丙烯酰胺溶于总体积为60ml的水中。加热至37℃溶解之，补加水至终体积为100ml。用Pall滤器（0.45μm孔径）过滤除菌，查证该溶液的pH值应不大于7.0，置棕色瓶中保存于室温。}
10% AP：Ammonium persulfate10%(w/v)-20℃保存一个星期，一般一次配1ml。 Glycine 144g 10×running buffer （1L） Tris-base 30g SDS 10g
加水至1L 1×running buffer （1L）: 直接从10×running buffer加水稀释 Glycine 145g 10× transfer buffer （1L） Tris-base 29g 加水至 1L
10×transfer buffer 100ml 1×transfer buffer （1L） methanol 200ml 加水至1L Tris-base 24.2g 10×TBS （1L） Nacl 80g 36%Hcl 约14ml pH调至7.6，加水至1L 10×TBS 100ml
1×TBST （1L） Tween-20 0.5ml（即0.05%，临用时加入）
加水至1L
封闭液(5%)：也为抗体稀释液，5g脱脂奶粉溶于100ml 1×TBST配制
Glycerine 2ml（20%）
20×loading buffer(变性剂) bromophenol blue 0.03%（适量） DTT 0.3ml（3%）
4×upper tris 7.7ml 4×upper tris：Tris-base 12.12g（0.5M）、10%SDS 8ml，PH6.8，总计200ml
1×sample buffer：50mmol/L Tris-HCl(PH6.8),20g/L SDS(电泳级)，10%Glycerol
Ponceau S 丽春红: 0.1%, 0.1g溶于5ml冰醋酸;H2O 至100ml，4℃保存。（可重复使用） DTT
组份浓度： 1 M DTT 配制量：10mL 配制方法：
1. 称取1.545g DTT，加入到15mL塑料离心管内。
2. 加10mL的0.01 M 的NaOAc（醋酸钠）（pH5.2），溶解后使用0.22μm滤器过滤除菌。 3. 适量分成小份后，-20℃保存。 3 M 醋酸钠（NaOAc）（100 ml）
1．称取40.8 g NaOAc•3H2O置于100～200ml烧杯中，加入约40ml的去离子水后搅拌溶解。
2．加冰醋酸调节pH值至5.2。
3．定容至100 ml，高压灭菌后室温保存。 （参照《分子克隆》二版P884）
0.01 M NaOAc (pH5.2) 参照此配方配制。
实验步骤
一、蛋白样品制备
1、 培养细胞的蛋白质样品的制备（还没做过组织的，以后补充）
a、收集：细胞培养至皿（100cm）上长满时，经PBS漂洗3次，加入1ml的1×sample buffer,细胞刮收集，冰上操作，转移至离心管中，置-20℃保存。
b、裂解：超声（超声5s间歇10s，功率100至120w）或注射器反复抽吸破碎，至细胞裂解液澄清不粘稠为止。置于冷冻离心机4℃25000g离心15min取上清； 2、 BCA（标准曲线）蛋白定量： a. 准备蛋白标准品 Vial A B C D E F G H I 标准品的稀释（20–2,000 μg/ml） H2O体积（ul） BSA体积（ul） 0 100 μl of Stock 50 150 μl of Stock 100 100 μl of Stock 50 50 μl of vial B dilution 100 100 μl of vial C dilution 100 100 μl of vial E dilution 100 100 μl of vial F dilution 100 25 μl of vial G dilution 100 0 BSA浓度 2,000 μg/ml 1,500 μg/ml 1,000 μg/ml 750 μg/ml 500 μg/ml 250 μg/ml 125 μg/ml 25 μg/ml 0 μg/ml b. 准备工作液 Working Reagent(A:B=50:1 )
所需体积=(# standards + # unknowns) × (# replicates) × (volume of WR per sample) c．操作步骤：
1.吸取25ul标准品及待测样品到96孔板（复孔1个），sample/WR=1:8（如果样品量太少多，改为上10ul sample/WR=1:20，检测范
围125-2,000 μg/ml）
2.加200ul的WR，摇床混匀1min；
3．合上盖子在37℃孵育30min； 4．冷却至室温，约20-30min
5.在紫外分光光度计562nm下读数 6.画标准曲线，算出待测样品浓度
3、 蛋白变性：在提取的蛋白中按每100ul加5ul 20×loading buffer混匀后，置98℃水浴锅中煮沸10min使蛋白变性。若离心5min可以避免拖尾现象。
二、制胶
1、 分离胶：一般来说，蛋白分子量越小 需要胶的浓度越大，SDS-PAGE分离胶浓度最佳分离范围（6%胶 50-150Kd；8%胶 30-90kD；10%胶 20-80kD；12%胶 12-60kD；15%胶 10-40kD）
按比例配制分离胶，轻缓摇动溶液8~9次，使激活剂混合均匀，配好后灌胶，然后用超纯水封胶。当水和胶之间有一条折射线时（约30min），就可倒去胶上层水并用吸水纸将水吸干。 2、 浓缩胶：沿玻璃板平缓注入凝胶溶液，然后保持水平插梳（上样孔不得留有气泡），静置30min后保证完全聚合。 3、 上样，依次加入蛋白marker和待分析样品，加样时间尽量短，避免样品扩散和边缘效应，可在未加样的孔中加入等量样品缓冲液。
三、 电泳
加样完毕，盖好电泳槽盖子并选择适当恒压，一般浓缩胶80V，20min，分离胶120V，90min，电泳至溴酚蓝跑出凝胶末端处即可停止。（通电时，检查有否气泡产生） 四、电转
电泳结束后，取出凝胶，在预冷电转甘氨酸缓冲液中漂洗数秒； 1、膜的预处理：
按胶的大小剪下相应大小的PVDF膜（在右上角剪一个缺角，作为转膜时正面的标记，下方标注蛋白名称、日期）；将PVDF膜于甲醇中浸泡3-5min，放置于转膜液中； 2、按胶的大小剪切转膜用滤纸，共6张，置于转膜液中浸湿5min； 3、将浸透转移液的海绵、滤纸、PVDF膜和胶按下列顺序从下至上放置于湿转膜器中。从下至上为：夹子透明边-海绵－三层滤纸－PVDF膜－胶－三层滤纸－海绵-夹子黑色边。用玻璃棒轻轻碾压，挤出可能存在的气泡；放入转膜器（注意方向，PVDF膜对正极，胶对负极）；
4、加入4℃预冷 Transfer buffer，80mA恒流转膜（低温），分子量50KDa左右的蛋白用120min，20KDa左右的用90min。一般转膜电流200mA之间，时间30~60min或15~20mA过夜。大片段（>50KD）可选350mA，小片段可选250mA。滤纸最好不要比膜大，防止短路，各层之间无气泡。槽内夹子两旁放入冰袋。
五、膜的封闭
进行抗体杂交前需对转印膜进行封闭，防止免疫试剂的非特异性吸附，取1×TBS漂洗3次×5min的转印膜，放入5%脱脂奶粉的封闭液内，摇床震动，室温封闭1h。
六、抗体杂交
封闭后的杂交膜放入杂交袋中，加入抗体稀释液稀释的一抗，去除袋内所有气泡，封口，4℃孵育过夜或室温（22~25℃）摇动孵
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