西北大学博士学位论文
综上所述，各方法均顾此失彼，在具体放大过程中，要根据具体情况选择使用，不可能有一种完美的满足各参变量要求的放大模式。在放大过程中，大罐的混合强度、气泡大小、气泡分布、浓度梯度、滚动程度均与小罐存在差异，在讲放大原理和方法时，不可能对这些参变量进行全面考虑，面恰恰是这些参数引起的放大效应阻碍着每个工艺的成功放大，因此在实际应用过程中，要根据情况对用某一放大准则求出的放大基准参数进行必要的、合理的修正【戚以政夏杰２００４］。
有一些放大方面的研究值得注意。采用链霉菌ｈｙｇｒｏｓｃｏｐｉｃｕｓ生产ｂｉａｌａｐｈｏｓ的放大生产中，基于ｋＬａ和Ｐ∥Ｌ的放大并不成功，其原因在于发酵罐内存在很大的溶氧浓度梯度。而在以上这个情况下，培养物对于放大雩｜起的搅拌桨叶尖速度的变化并不敏感。当采取实验室发酵罐中的溶解氧浓度放大时则取得了成功［Ｔａｋｅｂｅｅｔａ１．１９９４］。在＆ｈｙｇｒｏｓｃｏｐｉｃｕｓ产米尔倍霉素的生产小试中采用搅拌速度控制溶解氧浓度，而当放大规模同样采取搅拌速度控制溶解氧浓度时，却引起了生产中其它问题的恶化，这种现象被简称为ＳＵＤＳ（Ｓｃａｌｅ－ｕｐｄｅｔｅｒｉｏｒａｔｅｄｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎｓｙｎｄｒｏｍｅ）并发症［Ｊｕｎｋｅｒ２００４］。ＳＵＤＳ并发症包括培养物形态发生变化，而形态变化影响压紧细胞体积和黏度，并引起碳源吸收变化，从而降低产率。通过将通气速率、反应器操作压力、温度以及搅拌速度相结合以控制溶氧的策略使得敖大后可保持实验室的产率。
１．３．３．３氧传递在发酵过程中的重要作用
大多数工业微生物过程都魁好氧的，而且其培养基大多数为包含盐和有机物的水溶液。在这些过程中，氧是微生物用于生长、维持和代谢产物生产的重要基质，氧的缺乏会直接影响过程结果［Ｇａｒｃｉａ－Ｏｃｈｏａ＆Ｇｏｍｅｚ２００９１。而生物反应器中氧的传递往往会成为发酵的控制因素。这主要是由于氧在水中溶解度很小所致，在２５℃和１０１．３２５ｋＰａ下，空气中的氧在缝水中的溶解度仅为０．２５ｍｏｂ＇ｍ３左右，毙糖鲶溶解度小７０００倍【范代娣２０００］。培养基中因含有大量有机物和无机盐离子，因而氧在培养基中的溶解度就更低。在细胞的对数生长期若停止供氧，则发酵液中的溶解氧会在几分钟内耗尽；尤其在发酵后期，反应器中生物量很大，发酵液粘度也增大，此时氧的溶解和传递往往是细胞反应的限制步骤［马晓轩２００６］。供氧不足会导致兼性好氧菌的代谢途径发生改变，如在酵母菌发酵过程中产生乙醇［Ｈｅｎｓｉｎｇ
Ｅｉｔｅｍａｎ＆Ａｌｔｍａｎ２００６；Ｍｅｙｅｔｅｔａ１．１９９５１，在Ｅｃｏｌｉ发酵过程中产生乙酸［Ｌｅｅ１９９６；ａｌ。２００７］，从而影响整个发酵过程的结果。
氧从气泡传递到细胞内要克服一系列的阻力，如图ｌ一２【范代娣２０００］所示。在这些阻力项中，气泡周围的液臌阻力往往控制着整个传递过程［Ｇａｒｃｉａ．Ｏｃｈｏａ＆Ｇｏｍｅｚ２００９】。
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